دوره 6، شماره 2 - ( 5-1398 )                   جلد 6 شماره 2 صفحات 198-205 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Sagharyan M, Ganjeali A, Cheniany M. Investigating the effect of antioxidant compounds and various concentrations of BAP and NAA on the improvement of in vitro stem and root formation of Nepeta binaloudensis Jamzad . nbr. 2019; 6 (2) :198-205
URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-3138-fa.html
ساغریان مصطفی، گنجعلی علی، چنیانی منیره. بررسی تأثیر آنتی­ اکسیدان ­ها و غلظت­ های مختلف هورمون BAP و NAA بر ساقه­ زایی و ریشه­ زایی گیاه دارویی پونه­ سای بینالودی. یافته های نوین در علوم زیستی. 1398; 6 (2) :198-205

URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-3138-fa.html


دانشگاه فردوسی مشهد ، ganjeali@um.ac.ir
چکیده:   (300 مشاهده)
گیاه پونه­ سای بینالودی (Nepeta binaloudensis Jamzad) از گیاهان بومی و دارویی ایران است. این گیاه به علت برداشت بی­ رویه و تخریب رویشگاه آن در خطر انقراض قرار گرفته است ما به بررسی تاثیر آنتی­ اکسیدان­ ها و غلظت­ های مختلف هورمون BAP و NAA بر بهبود شاخه ­زایی و ریشه زایی گیاه پونه بینالودی تحت شرایط درون شیشه پرداختیم. ریزنمونه­ های ساقه در محیط کشت ½ MS حاوی 5/0 میلی­ گرم بر لیتر هورمون BAP به همراه غلظت ­های مختلف آسکوربیک اسید (100 و 200 میلی­گرم بر لیتر) و گلوتاتیون احیا (1 و 2 میکرو مول بر لیتر) کشت شدند. سپس اثر غلظت ­های مختلف هورمون BAP (5/0، 1 و 5/1 میلی­گرم بر لیتر) بر ساقه­ زایی این گیاه محاسبه شد. همچنین ریشه ­زایی، ساقه ­های باززایی شده در محیط کشت ½ MS حاوی غلظت­ های مختلف NAA (5/0، 1 و 5/1 میلی­ گرم بر لیتر) بررسی شد. نتیاج نشان داد که ترکیب آنتی اکسیدان اثر معنی­ داری بر ساقه ­های تولیدی در محیط کشت ½ MS  حاوی 5/0 میلی­ گرم بر لیتر BAP داشت. غلظت 2 میکرومول بر لیتر گلوتاتیون احیا در مقایسه با دیگر تیمارهای آنتی­ اکسیدانی منجر به افزایش ساقه ­زایی شد. غلظت­ های 1 و 1/5 میلی­ گرم بر لیتر BAP اثر معنی­ داری (p-value<0.05) بر درصد ساقه ­زایی و تعداد ساقه ­های تولیدی داشت. در مقابل، درصد ریشه ­زایی و میانگین طول ریشه در غلظت 2 میلی­ گرم بر لیتر هورمون NAA افزایش یافت. ما استفاده از این تیمارها را برای ریز ازدیادی کار آمد این گیاه در حال انقراض پیشنهاد می­ کنیم.
 



 

 
متن کامل [PDF 718 kb]   (57 دریافت)    
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: علوم گیاهی
دریافت: ۱۳۹۷/۳/۲۸ | ویرایش نهایی: ۱۳۹۸/۶/۹ | پذیرش: ۱۳۹۷/۵/۱۱ | انتشار: ۱۳۹۸/۵/۸ | انتشار الکترونیک: ۱۳۹۸/۵/۸

فهرست منابع
1. Aicha, N. and Abdelmalek, E. 2014. In vitro regeneration and clonal multiplication of Thymus bleicherianus Pomel, a rare and threatened medicinal and aromatic in Morocco. - J. Med. Aromat. Plants 3: 145. [DOI:10.4172/2167-0412.1000145]
2. Aliyo, O.M. 2005. Application of tissue culture to cashew (Anacardium occidentale) breeding: an appraisal. - AJB 4: 1485-1489.
3. Andrade, L. and Basso, R. 2005. Micropropagation of Lavandula dentata from axillary buds of field-grown adult plants. - Biol. Plantarum 3: 439-442. [DOI:10.1007/s10535-005-0024-7]
4. Arikat, N.A, Javad F.M., Karam, N.S. and Shilbi, R.A. 2004. Micropropagatin and accumulation of essential oil in wild sage (Salvia fruticosa Mill.). - Sci. Hortic. 100: 193-202. [DOI:10.1016/j.scienta.2003.07.006]
5. Arnon, D. and Hoagland, D. 1940. Crop production in artificial culture solutions in soils with special reference to factors influencing yields and absorption of inorganic nutrients. - J. Soil Sci. 50: 463-485.
6. Daniel, A., Kalidass, C. and Mohan, V.R. 2010. In vitro multiple shoot induction through axillary bud of Ocimum basilicum L. an important medicinal plant. - IJBT 5: 24-28.
7. De Pinto, M.C., Tommasi, F. and De Gara, L. 2000. Enzymes of the ascorbate biosynthesis and ascorbate-glutathione cycle in cultured cells of tobacco Bright Yellow 2. - Plant Physiol. Biochem. 38: 541-550. [DOI:10.1016/S0981-9428(00)00773-7]
8. Dibax, R., Eisfeld, C., Chuquel, F., Koehler, H. and Quoirin, M. 2005. Plant regeneration from cotyledonary explants of Eucalyptus camalduensis. - Sci. Agricola. 62: 406-412. [DOI:10.1590/S0103-90162005000400016]
9. Dutta Gupta, S. and Datta, S. 2003. Antioxidant enzyme activities during in vitro morphogenesis of gladiolus and the effect of application of antioxidants on plant regeneration. - Biol. Plant 47: 179-183. [DOI:10.1023/B:BIOP.0000022248.62869.c7]
10. Ewa, S., and Wysokinska, H. 2004. In vitro regeneration of Salvia nemerosa L. from shoot tips and leaf explants. - In vitro Cell Dev. Biol. Plant. 40: 596-602. [DOI:10.1079/IVP2004580]
11. Ghahreman, A. 1999. Biodiversity of Plants in Iran. Tehran University, Iran Synder. R.L. (1985). Hand calculating degree-days. - J. Agri. Meteoy. 35: 353-358. [DOI:10.1016/0168-1923(85)90095-4]
12. Ghannadi, A., Aghazari, F., Mehrabani, M., Mohagheg-hzadeh, A. and Mehregan, I. 2003. Quantity and comp-osition of the SDE prepared essential oil of Nepeta macrosiphon Bioss. - Iran. J. Pharm. Res. 2: 5-103.
13. Ghanti, K., Kaviraj, C.P., Venugopal, R.P., Jabeen, F.T.Z. and Rao, S. 2003. Rapid regeneration of Mentha piperita L. of shoot tip and nodal explant. - IBJT 5: 594-598.
14. Jamzad, Z. 2012. Lamiaceae. - In: Assadi, M. et al. (eds.): Flora of Iran, No. 76. - RIFR, Tehran. 1066 pp.
15. Jose, M.C.S., Romero, L. and Janeiro, L.V. 2012. Effect of Indole-3-Butyric Acid on root formation in Alnus glutinosa. - Silva Fenn. 46: 643-654. [DOI:10.14214/sf.916]
16. Joy, R.W., Patel, K.R. and Thorpe, T.A. 1988. Ascorbic acid enhancement of organogenesis in tobacco callus. - PCTOC 13: 219-22. [DOI:10.1007/BF00043670]
17. Kariyana, K. and Nisyawati, N. 2013. Effect of ascorbic acid, activated carbon and light duration on explant
18. browning of banana cultivar barangan (Musa acuminata L.) in vitro culture. - IJRRAS 16: 118-123.
19. Karuppusamy, S., Kiranmai, C., Aruna, V. and Pullaiah, T. 2006. Micropropagation of Vanasushava pedata. An endangered medicinal plant of South India. - BAPTCB 16: 85-94. [DOI:10.3329/ptcb.v16i2.1109]
20. Mederos Molina, S. 2006. Micropropagation of Salvia broussonetii Benth. a medicinal plant species. - BAPTCB 16: 19-23. [DOI:10.3329/ptcb.v16i1.1101]
21. Modarres, M., Lahouti, M., Gangeali, A. and Asili, J. 2012 Study of micropropagation of Salvia lerifolia Benth. using shoot tip. - J. Plant Biol. 4: 89-100.
22. Murashige, T., and Skoog, F.A. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. - Plant Physiol. 15: 473-479. [DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x]
23. Nadjafi-Pour, N., Valizadeh, M., Mostafavi, E. and Maassomi, A.A. 2016. Micro propagation study of Nepeta binaloudensis Jamzad in vitro culture. International conference on new horizon of biology in agricultural Science. Tehran, Society of Modern Science and Technology.
24. Nadjafi, F., Koocheki, A., Honermeier, B. and Asili, J. 2009. Autecology, Ethnomedicinal and phytochemical studies of Nepeta binaloudensis Jamzad a highly endangered medicinal plant of Iran. - J. Essent. Oil Bear Plant 12: 37-41. [DOI:10.1080/0972060X.2009.10643699]
25. Nomura, K., Matsumoto, S., Masuda, K. and Inoue, M. 1998. Reduced glutathione promotes callus growth and shoot development in a shoot tip culture of apple stock. - Plant Cell Rep. 17: 597-600. [DOI:10.1007/s002990050449]
26. Pei, S. 2001. Ethnobotanical approaches of traditional medicine studies: some experiences from Asia. - Pharm. Biol. 39: 74-79. [DOI:10.1076/phbi.39.7.74.5869]
27. Pellny, T.K., Locato, V., Vivancos, P.D., Markovic, J., De Gara, L., Pallardó, F.V. and Foyer, C.H. 2009. Pyridine nucleotide cycling and control of intracellular redox state in relation to poly (ADPribose) polymerase activity and nuclear localization of glutathione during exponential growth of Arabidopsis cells in culture. - Mol. Plant 2: 442-456. [DOI:10.1093/mp/ssp008]
28. Rout, G.R. 2000. In vitro manipulation and propagation of medicinaplants. - Biotechnol. Adv. 18: 91-120. [DOI:10.1016/S0734-9750(99)00026-9]
29. Rustaiyan, A. and Nadji, K. 1999. Composition of the essential oils of Nepeta isphanica Boiss and Nepeta binaloudensis Jamzad from Iran. - Flavour Fragr. J. 35-37. https://doi.org/10.1002/(SICI)1099-1026(199901/02)14:1<35::AID-FFJ776>3.0.CO;2-N [DOI:10.1002/(SICI)1099-1026(199901/02)14:13.0.CO;2-N]
30. Skala, A. and Wysokinska, A. 2006. In vitro Regeneration of (Salvia nemorosa L.) from shoot tips and leaf explants. - In Vitro Cell Dev. Biol. Plant 1: 90-151.
31. Sulistiarini, D.L. 1999. Ocimum gratissimum L. In: A. P. L. Oyen and D. X. Nguyen, Eds. Plant Resources of South- East Asia No. 19: Essential Oils Plants. Prosea Foundation, Bogor. 140-142.??
32. Tawfik, A. A., and Mohamed M.F. 2007. Regeneration of Salvia officinalis L. via induction of meristematic callus. - In Vitro Cell Devel. Biol. Plant 43: 21-27. [DOI:10.1007/s11627-006-9002-9]
33. Titov, S., Bhowmik, S., Mandal, A., Alam, M. and Nasir, A. 2006. Control of phenolic compound secretion and effect of growth regulators for organ formation from Musa spp. cv. Kanthali floral bud explants. - Am. J. Biochem. Biotech. 2: 97-104. [DOI:10.3844/ajbbsp.2006.97.104]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به سامانه نشریات علمی یافته های نوین در علوم زیستی است.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2015 All Rights Reserved | Nova Biologica Reperta

Designed & Developed by : Yektaweb