دوره 6، شماره 2 - ( 5-1398 )                   جلد 6 شماره 2 صفحات 176-183 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Heidargholinejad F, Moradi H, Karimi M, Akbarpour V. Callus induction in Portulaca oleracea L. by different hormone concentrations and explant types. nbr. 2019; 6 (2) :176-183
URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-2972-fa.html
حیدر قلی نژاد فرشته، مرادی حسین، کریمی مهناز، اکبرپور وحید. بررسی کالوس ­زایی گیاه خرفه تحت ­تاثیر غلظت­ های مختلف هورمونی و انواع ریزنمونه. یافته های نوین در علوم زیستی. 1398; 6 (2) :176-183

URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-2972-fa.html


دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری ، moradiho@yahoo.com
چکیده:   (243 مشاهده)
گیاه دارویی خرفه (Portulaca oleracea L.) حاوی مواد موثره ارزشمندی نظیر دوپامین، نورآدرینالین و امگا-3 است. این گیاه در صنایع مختلف دارویی، غذایی و بهداشتی و در درمان بیماری­های مختلفی نظیر دیابت، ناراحتی­های قلبی، تسکین درد­ها کاربرد دارد. کالو س­های تهیه شده از گیاهان دارویی مختلف را می­توان به منظور افزایش مواد موثره در کشت سوسپانسیون سلولی و انتقال ژن مورد استفاده قرار داد. هدف از انجام این آزمایش بررسی اثر متقابل غلظت­های مختلف دو هورمون BAP (0، 1 و 2 میلی­گرم بر لیتر) و 2,4-D (0، 5/0 و 5/1 میلی­گرم بر لیتر) بر دو ریزنمونه برگی و مریستم انتهایی برای تولید کالوس بود. نتایج حاصل از تجزیه واریانس داده ­ها نشان داد که اثرمتقابل هورمون­ها و نوع ریزنمونه بر صفاتی مانند درصد القا کالوس، وزن تر و قطر کالوس در سطح احتمال 1 درصد معنی ­دار است. بهترین کالوس­ دهی در ریزنمونه برگ با درصد القا کالوس 100 درصد، وزن تر 121 میلی­ گرم و قطر کالوس 5/106 میلی­متر در ترکیب هورمونی 2 میلی­ گرم بر لیتر BAP و 0/5 میلی­ گرم بر لیتر 2,4-D به دست آمد. ریزنمونه مریستم با 75 درصد کالوس، 106 میلی­گرم وزن تر و 3/03 میلی­ متر قطر کالوس در ترکیب هورمونی 1 میلی­ گرم بر لیتر BAP و 0/5 میلی­ گرم بر لیتر 2,4-D در رده بعدی قرار گرفت.

 
متن کامل [PDF 795 kb]   (51 دریافت)    
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: علوم گیاهی
دریافت: ۱۳۹۶/۷/۷ | ویرایش نهایی: ۱۳۹۸/۷/۱۳ | پذیرش: ۱۳۹۷/۲/۴ | انتشار: ۱۳۹۸/۵/۸ | انتشار الکترونیک: ۱۳۹۸/۵/۸

فهرست منابع
1. Abbasi, B., Saxena, P.K., Murch, S.J. and Liu, C.Z. 2007. Echinacea botechnology: challenges and opportunities. - In vitro Cel. Dev. Bio. 43: 481-492. [DOI:10.1007/s11627-007-9057-2]
2. Abdelmageed, A.H.A., Faridah, Q.Z., Norshuhada, K. and Julia, A.A. 2012. Call induction and plant regeneration of Michelia champaca L. (Magnoliaceae). - J. Med. Pla. Re. 6: 3338-3344. [DOI:10.5897/JMPR12.196]
3. Abubakar, D., Bakrudeen, A.A. and Rosna, M.T. 2014. In vitro callus induction and plant regeneration of Celosia argenta L. an important medicinal plant. - Bra. Arc. Bio. Tech. Int. J. 57: 860-866. [DOI:10.1590/S1516-8913201402611]
4. Ahmad, N., Fazal, H. and Zamir, R. 2011. Callogenesis and shoot organogenesis from flowers of Stevia rebaudiana Bertoni Bert. - Su. Tec. 13: 174-177. [DOI:10.1007/s12355-011-0083-3]
5. Ahmadi, G., Mohammadi, R., Garousi, KH. and Hosseini, R. 2012. Optimization callus and cell suspension (Catharanthus roseus L.). - J. Agr. Bio. 4: 157-163.
6. Alagumanian, S., Perumal, V.s., Rameshkannar, R. and Rao, M.V. 2004. Plant regeneration from leaf and stem explants of Solanum trilobatum L. - Cur. Sci. 86: 1478-1480.
7. Arafeh, R.M., Shibli, R.A., Al-Mahmoud, M. and Shatanwi, M.A. 2006. Callusing cell suspension culture and secondary metabolites production in Persian oregano (Origanum vulgar L.) and Arabian oregano (O. syriacum L.). - J. Agr. Sci. 2: 274-281.
8. Arda, A., Ozen, F. and Kiran, R. 2012. Development of an efficient callus production protocol for Amsonia orientakis: A critically endangered medicinal plant. - E. A. J. Bio. 6: 105-112. [DOI:10.5053/ejobios.2012.6.0.13]
9. Bakhtiar, Z., Mirjalilian, M.H. and Sonboli, A. 2016. In vitro callus induction and micropropagation of Thymus persicus L. (Lamiaceae), an endangered medicinal plant. - Cr. Br. Ap. Bio.16: 48-54. [DOI:10.1590/1984-70332016v16n1a8]
10. Borijian, L. and Arak, H. 2013. A study on the effect of different concentration of plant hormones (BAP, NAA, 2,4-D, Kinetin) on callus induction in Brassica napus. - J. Ap. Ba. Sci. 5: 519-521.
11. Chen, J., Shi, Y.p. and Liu, J.Y. 2003. Determination of noradrenaline and dopamin in chines herbal extract from Portulaca oleracea L. by high-performance liquid chromatography. - J. Chr. A. 1003: 127-132. [DOI:10.1016/S0021-9673(03)00786-6]
12. Dighe, V., Dhotre, O., Gaurang, P. and Gursale, A. 2008. Quantification of dopamine in Portulaca oleracea L. by high-performanc thin layer chromatography. - J. Pla. Mat. 21: 183-186. [DOI:10.1556/JPC.21.2008.3.5]
13. Jala, Anchalee. 2014. Role of 2,4-D on callus induction and shoot formation of increase number of shoot in Miniature Rose In vitro. - Am. Tra. Eng. Ap. Sci. 3: 207-212.
14. Kouhi, L., Zare, N., Asghari, Z. and Shiekhzadehm-ossadegh, P. 2014. The role of plant growth regulators and different explants on reply tissue culture and cell suspention (Matricaria chomomilla L.). - Eco. Cr. J. 8: 203-214.
15. Magyar-Taboti, k., Dobranszki, J., Teixeira, D.A. and Silva, J.A. 2010. The role of cytokinins in shoot orga-nogenesis in apple. - Plant Cell Tis. Org. Cul. 101: 251-267. [DOI:10.1007/s11240-010-9696-6]
16. Mahmood, I., Razzaq, A., Khan, Z., Hafez, I.A. and Kaleem, S. 2012. Valuation of tissue culture responses of promising Wheat (Triticum aestivum L.) cultivars and development of efficient regen-eration system. - Pa. J. Bot. 44: 277-284.
17. Maziard, M., Khan, T. and Mohammad, F. 2011. Role of secondary metabolites in defense mechanism of plants. - Bio. Med. 3: 232-249.
18. Pirian, K., and Piri, Kh. 2014. Callus induction in hairy roots of Portulaca oleracea L. - Ir. J. Med. Aro. Plants. 30: 231-238.
19. Safdari, Y. and Kazemitabar, S.K. 2009. Plant tissue culture study on two different races of purslane (Portulaca oleracea L). - Af. J. Bio. 8: 5906-5912. [DOI:10.5897/AJB09.816]
20. Safdari, Y. and Kazemitabar, S.K. 2010. Direct shoot regeneration, callus induction and plant regeneration from callus tissue in Mose Rose (Portulaca grandiflora Hook.). - Plant Oman J. 3: 47-51.
21. Saikia, M., Shrivastava, K. and Sigh, S. 2013. Effect of culture media and growth hormone on callus induction in Aquilaria malaccensis Lam., a medicinally and commercially important tree species north east Indian. - As. J. Bio. Sci. 6: 96-105. [DOI:10.3923/ajbs.2013.96.105]
22. Saleh, R., Ghorbani, M., and Khalife, S. 2016. Effect of various concentrations of different growth regulating hormones on callus weight and the amount of thymol of Thymus daenensis Celak. - Plant Phy. 7: 1919-1923.
23. Sharafi, A., Hashemi, S.H., and Jourabchi, E. 2008. Improvement on the situation of regeneration of medicinal plant Artemisia annua L. - J. Enviro. Re. 21: 565-573.
24. Soltanipol, M., Mohammadi, A., Rahnama, H. and Abbaszadeh, B. 2011. Callus induction in (Melissa officinalis L.). - J. Agri. Crop Improv. 7: 45-54.
25. Teshome, S. and Feyssia, T. 2015. In vitro callus inductin and shoot regeneration from leaf explant s of Glinus lotoides L. L. an important medicinal plant. - Am. J. Plant Sci. 6: 1329-1340. [DOI:10.4236/ajps.2015.69132]
26. Urrea, A.I., Castrillon, P.A. and Monsalve, Z. 2009. In vitro propagation and tisular differentiation in Lippia dulcis Trevir.- Actualidades Biol. 31: 21-29.
27. Wani, M., Pande, S. and More, N. 2010. Callus induction studies in Tridax procumbens L. - Inter. J. Biotechnol. Appli. 2: 11-14. [DOI:10.9735/0975-2943.2.1.11-14]
28. Yang, X., Zhang, X., Yuan, D., Jin, F., Zhang, Y. and Xu, J. 2012. Transcript profiling reveals complex auxin signaling pathway and transcription regulation involved in dedifferentiation and redifferentiation during somatic embryogenesis in cotton. - BMC Plant Bio. 12: 102-110. [DOI:10.1186/1471-2229-12-110]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به سامانه نشریات علمی یافته های نوین در علوم زیستی است.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2015 All Rights Reserved | Nova Biologica Reperta

Designed & Developed by : Yektaweb