دوره 5، شماره 4 - ( 12-1397 )                   جلد 5 شماره 4 صفحات 365-371 | برگشت به فهرست نسخه ها

XML English Abstract Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Mahmoodi R, zanganehnejad Z, Setorki M. Protective effect of Biarum carduchrum extract on depression and pain in Parkinson's model induced by 6-hydroxydopamine in rats. nbr. 2019; 5 (4) :365-371
URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-2751-fa.html
محمودی راضیه، زنگنه نژاد زهرا، سترکی محبوبه. اثر حفاظتی عصاره گیاه کارده بر افسردگی و درد در مدل پارکینسون ایجاد شده توسط 6-هیدروکسی دوپامین در موش‌های صحرایی . یافته های نوین در علوم زیستی. 1397; 5 (4) :365-371

URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-2751-fa.html


دانشگاه ازاد شهرکرد ، zzangenehnejad@yahoo.com
چکیده:   (36 مشاهده)

بیماری پارکینسون  یک اختلال طولانی مدت دستگاه عصبی مرکزی است که به طور عمده سیستم حرکتی را تحت تأثیر قرار می‌دهد. درد و اختلالات خلقی و ناشی از بیماری پارکینسون اثر نامطلوبی بر کیفیت زندگی فرد دارد. گیاه کارده گیاهی با اثرات آنتی‌اکسیدانی است که در طب سنتی نیز کاربرد دارد. هدف اين تحقيق بررسي اثر عصاره کارده بر افسردگی و درد ناشی از تزریق نوروتوکسین 6-هیدروکسی دوپامین در موش‌های صحرایی نر است. موش‌های‌ صحرایی به صورت تصادفی به 5 گروه 8 تایی تقسیم شدند. گروه کنترل نرمال سالین دریافت کردند. گروه پارکینسونی (PD)، با تزریق نوروتوکسین 6- هیدروکسی دوپامین در دﺳﺘﻪ ﻗﺪاﻣﯽ- ﻣﯿﺎﻧﯽ ﻣﻐﺰ (MFB) پارکینسونی شدند. گروه‌های سوم، چهارم و پنجم 7 روز پس از القای مدل پارکینسون با دوزهای 100، 200 و 400 عصاره کارده  به روش گاواژ  به مدت 14 روز تیمار شدند و در روز 15 تست‌های رفتاری شامل تست شنای اجباری و تیل فیلیک انجام شد. تیمار موش‌های پارکینسونی با عصاره کارده در غلظت‌های 100، 200 و 400 به طور چشمگیری مدت زمان بی‌حرکتی را در آزمون شنای اجباری کاهش داد  (05/0p<). تیمار موش‌های پارکینسونی با عصاره کارده در دوزهای 100، 200 و 400 میلی‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن به طور معنی‌داری مدت زمان مقاومت به درد را نسبت به گروه پارکینسونی افزایش داده است (05/0p<) . نتایج این مطالعه نشان می‌دهد عصاره گیاه کارده باعث بهبود افسردگی و کاهش درد ناشی از القای پارکینسون  می‌شود که احتمالاً به اثرات آنتی‌اکسیدانی آن مربوط است.
 

متن کامل [PDF 682 kb]   (18 دریافت)    
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی | موضوع مقاله: علوم جانوری
دریافت: ۱۳۹۵/۱۱/۲۱ | ویرایش نهایی: ۱۳۹۸/۱/۱۷ | پذیرش: ۱۳۹۶/۳/۱۶ | انتشار: ۱۳۹۷/۱۲/۲۷ | انتشار الکترونیک: ۱۳۹۷/۱۲/۲۷

فهرست منابع
1. Bender, A., Krishnan. K.J., Morris, C.M., Taylor, G.A., Reeve, A.K., and Perry, R.H. 2006. High levels of mitochondrial DNA deletions in substantia nigra neurons in aging and Parkinson disease. – Nat. Genet. 38: 515-517. [DOI:10.1038/ng1769]
2. Bilang-Bleuel, A., Revah, F., Colin, P., Locquet, I., Robert, J.J., and Mallet, J. 1997.Intrastriatal injection of an adenoviral vector expressing glial-cell-line-derived neurotrophic factor prevents dopaminergic neuron degeneration and behavioral impairment in a rat model of Parkinson disease. – Proc. Natl. Acad. Sci.- 94: 8818-8823. [DOI:10.1073/pnas.94.16.8818]
3. Bläsig, J., Reinhold, K., and Herz, A. 2003.Effect of 6-hydroxydopamine, 5, 6-dihydroxytryptamine and raphe lesions on the antinociceptive actions of morphine in rats. – Psychopharmacol. 2: 22-26.
4. Boyce P.C. 2008. A taxonomic revision of Biarum. –Curtis's Botani Maga. 25: 2-17. [DOI:10.1111/j.1467-8748.2007.00607.x]
5. Dauer, W., and Przedborski, S. 2003. Parkinson's disease: mechanisms and models. – Neuron. 39: 889-909. [DOI:10.1016/S0896-6273(03)00568-3]
6. Ebadi M., Srinivasan, S.K., and Baxi, M.D. 1996. Oxidative stress and antioxidant therapy in Parkinson's disease. – Prog. Neurobiol. 48: 1-19. [DOI:10.1016/0301-0082(95)00029-1]
7. Gao, H., Cassidy, A., Schwarzschild, M.A., and Rimm, M.B. 2012. Habitual intake of dietary flavonoids and risk of Parkinson disease. – Neurol. 55: 36-45. [DOI:10.1212/WNL.0b013e31824f7fc4]
8. Hosseini, E., Rousta, E., TabibLoghmany, F., and Mahmoudpour, M. 2014. In vitro antioxidant activity of hydromethanolic extract of karde (Biarum carduchrum) and its effects on the serum lipids of rats. – Iran J. Nutr. Sci. Food Technol. 9: 1-8.
9. Kabuto H., Nishizawa, M., Tada, M., Higashio, C., Shishibori, T., Kohno, M. 2005. Zingerone [4-(4-hydroxy-3-methoxyphenyl)-2-butanone] prevents 6-hydroxydopamine-induced dopamine depression in mouse striatum and increases superoxide scavenging activity in serum. – Neurochem Res. 30: 325-332. [DOI:10.1007/s11064-005-2606-3]
10. Karimi, H. 2002. A dictionary of Iran's vegetation plants. – Tehran: Parcham Publisher 8: 3-6.
11. Lee, M.A., Walker, R.W., Hildreth, T.J., and Prentice, W.M. 2006. A Survey of pain in idiopathic Parkinson's disease. – JPSM. 32: 462-469. [DOI:10.1016/j.jpainsymman.2006.05.020]
12. Mayeux, R., Stern, Y., Rosen, J., and Leventhal, J. 1981. Depression, intellectual impairment, and Parkinson disease. – Neurol. 31: 645-649. [DOI:10.1212/WNL.31.6.645]
13. Nikoui, V., Ostadhadi, S., ImranKhan, M., and Allahverdi, A. 2016.Evaluation of the analgesic effect of Thymus kotschyanus hydroalcoholic extract in male mice by formalin and tail flick tests. – JBCP. 4: 1-6
14. Rabiei, Z., Gholami, M., and Rafieian-Kopaei, M. 2016. Antidepressant effects of Mentha pulegium in mice. – Bangladesh J. Pharmacol. 11: 711-715. [DOI:10.3329/bjp.v11i3.27318]
15. Rice-evans, C.A., Miller, N.J., Bolwell, P.G., Bramley, P.M., and Pridham, J.B. 1995. The relative antioxidant activities of plant-derived polyphenolic flavonoids. ‎– Free Radic. Res. 22: 375-383. [DOI:10.3109/10715769509145649]
16. Rijk MC, Breteler MM, and Breeijen H. 1997. Dietary antioxidants and Parkinson disease: the Rotterdam Study. – Arch. Neurol. 54: 762-765 [DOI:10.1001/archneur.1997.00550180070015]
17. Salinas M, Diaz, R., Abraham, NG, de, Galarreta, C.,M.,R., Cuadrado, A. 2003. Nerve growth factor protects against 6-hydroxydopamine-induced oxidative stress by increasing expression of heme oxygenase-1 in a phosphatidylinositol 3-kinase-dependent manner. – J. Biologi Chem. 278: 13898-13904. [DOI:10.1074/jbc.M209164200]
18. Schwarting, R., and Huston, J. 1996. Behavioral and neurochemical dynamics of neurotoxic meso-striatal dopamine lesions. – Neurotoxicology 18: 689-708.
19. Seifi Zangeneh, M., Rafieirad, M., and Sazgar, H. 2015.The effect of Kardeh (Biarum Bovei) hydro-alcoholic extract on pain threshold in STZ induced diabetic rats. – J. Herb. Drugs 6: 137-142.
20. Sowndhararajan, K., Joseph, J.M., and Manian, S. 2013.Antioxidant and free radical scavenging activities of Indian Acacias: Acacia leucophloea (Roxb.) Willd., Acacia ferruginea DC., Acacia dealbata Link. and Acacia pennata (L.) Willd. – Int. J. Food Prop. 16: 1717-1729. [DOI:10.1080/10942912.2011.604895]
21. Wernig, M., Zhao, J.P., Pruszak, J., Hedlund, E., Fu, D., and Soldner, F. 2008. Neurons derived from reprogrammed fibroblasts functionally integrate into the fetal brain and improve symptoms of rats with Parkinson's disease. – PNAS 105: 5856-5861. [DOI:10.1073/pnas.0801677105]
22. Williams, C.A, Harborne, J.B, and Mayo, S.J. 1981. Anthocyanin pigments and leaf flavonoids in the family Araceae. – Phytochem. 20: 217-234. [DOI:10.1016/0031-9422(81)85096-0]
23. Bredholt, H., Fjærvik, E., Johnsen, G., and S. B. Zotchev. S. B. 2008. Actinomycetes from sediments in the Trondheim fjord, Bredholt, H., Fjærvik, E., Johnsen, G. and Zotchev. S.B. 2008. Actinomycetes from sediments in the Trondheim fjord, Norway: diversity and biological activity. – Mar. Drugs 6: 12-24. [DOI:10.3390/md6010012]
24. Demain, A.L. and Sanchez, S. 2009. Microbial drug discovery: 80 years of progress. – J. Antibiotics 62: 5. [DOI:10.1038/ja.2008.16]
25. Claverias, F.P., Undabarrena, A., Gonzalez, M., Seeger, M. and Camara B. 2015. Culturable diversity and antimicrobial activity of Actinobacteria from marine sediments in Valparaísobay. Chile. – Front. Microb. 6: 737-743. [DOI:10.3389/fmicb.2015.00737]
26. Fischbach, M.A. and Walsh, C.T. 2009 Antibiotics for emerging pathogens. – Science. 325: 1089-1093. [DOI:10.1126/science.1176667]
27. Gurung, T.D., Sherpa, C., Agrawal, V.P. and Lekhak B. 2009. Isolation and characterization of antibacterial actinomycetes from soil samples of Kalapatthar, Mount Everest Region. – Nepal J. Sci. Technol. 10: 173-182. [DOI:10.3126/njst.v10i0.2957]
28. Iwai, Y. and Omura S. 1992. Cultural conditions for screening of new antibiotics. – J. Antibiot. 34: 123-141.
29. Jenifer, J.S.C.A., Donio, M.T.B.S., Viji, V.T., Velmurugan, S., Babu, M.M., Dhas, S.A. and Citarasu T. 2013. Halo-alkaliphilic actinomycetes from solar salt works in India: diversity and antimicrobial activity. – Blue Biotechnol. J. 2: 137-142.
30. Kieser, T., Bibb, M.J., Buttner, M.J., Chater, K.F. and Hopwood, D.A. 2000. Practical Streptomyces Genetics. Crowes, Norwich, England.
31. Mohammadi, A., Calagari, M., Ladan-Moqaddam, AR. and Mirakhori, R. 2013. Investigation on growth and physiological characteristics of Populus euphratica Oliv. Provenances at Garmsar Desert Station. – Iran. J. For. Poplar Res. 21: 115-125
32. Ramesh, S. and Mathivanan, N. 2009. Screening of marine actinomycetes isolated from the Bay of Bengal, India for antimicrobial activity and industrial enzymes. – World. J. Microb. Biot. 25: 2103-2111. [DOI:10.1007/s11274-009-0113-4]
33. Saadoun, I. and Muhana, A. 2008. Optimal production conditions, extraction, partial purification and characterization of inhibitory compound(s) produced by Streptomyces Ds-104 isolate against multi-drug resistant Candida albicans. – Curr. Trends Biotechnol. Pharm. 2: 402-420.
34. Sharma, D., Kaur, T., Chadha, B.S. and Manhas, R.K. 2011. Antimicrobial activity of actinomycetes against multidrug resistant Staphylococcus aureus, E. coli and various other pathogens. – Trop. J. Pharm. Res. 10: 801-808. [DOI:10.4314/tjpr.v10i6.14]
35. Singh, L.S., Baruah, I. and Bora, T.C. 2006. Actinomycetes of Loktak habitat: isolation and screening for antimicrobial activities. – Biotechnol. 5: 217-221. [DOI:10.3923/biotech.2006.217.221]
36. Trabelsi, I., Oves, D., Manteca, A., Genilloud, O., Altalhi, A. and Nour, M. 2016. Antimicrobial activities of some Actinomycetes isolated from different rhizospheric soils in Tunisia. – Curr. Microbial. 73: 220-227. [DOI:10.1007/s00284-016-1053-5]
37. Ventosa, A., and Nieto. J.J. and Oren, A. 1998. Biology of moderately halophilic aerobic bacteria. – Microbiol. Mol. Biol. Rev. 62: 504-544.
38. Xue, L., Xue, Q., Chen, Q., Lin, C., Shen, G. and Zhao, J. 2013. Isolation and evaluation of Rhizosphere actinomycetes with potential application for biocontrol of Verticillium wilt of cotton. – Crop Prot. 43: 231-240. [DOI:10.1016/j.cropro.2012.10.002]
39. Yin, J., and Chen, J.C. and Wu, Q. and Chen, G.Q. 2015. Halophiles, coming stars for industrial biotechnology. – Biotechnol. Adv. 33: 1433-1442. [DOI:10.1016/j.biotechadv.2014.10.008]
40. Zhu, H., Swierstra, J., Wu, C., Girard, G., Choi, Y.H., Wamel, W.V., Sandiford, S.K. and Wezel, G.P. 2014. Eliciting antibiotics active against the ESKAPE pathogens in a collection of actinomycetes isolated from mountain soils. – Microbiol. 160: 1714-1726. [DOI:10.1099/mic.0.078295-0]

ارسال نظر درباره این مقاله : نام کاربری یا پست الکترونیک شما:
CAPTCHA code

ارسال پیام به نویسنده مسئول


کلیه حقوق این وب سایت متعلق به سامانه نشریات علمی یافته های نوین در علوم زیستی است.

طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق

© 2015 All Rights Reserved | Nova Biologica Reperta

Designed & Developed by : Yektaweb