دوره 8، شماره 3 - ( 7-1400 )
جلد 8 شماره 3 صفحات 205-195 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Soosani N, Ashengroph M. Extracellular green synthesis of zinc oxide nanoparticle by using the cell-free extract Rhodotorula pacifica NS02 and investigation of their antimicrobial activities. NBR 2021; 8 (3) :195-205
URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-3459-fa.html
URL: http://nbr.khu.ac.ir/article-1-3459-fa.html
سوسنی نشاط، آشنگرف مراحم، چهری خسرو. سنتز سبز و برون سلولی نانوذرات اکسیدروی توسط عصاره عاری از سلول Rdodotroula pacifica NS02 و بررسی خواص ضدمیکروبی آن. یافته های نوین در علوم زیستی. 1400; 8 (3) :195-205
دانشگاه کردستان، دانشکده علوم پایه، گروه علوم زیستی، سنندج، ایران ، m.ashengroph@uok.ac.ir
چکیده: (2282 مشاهده)
سنتز زیستی نانوذرات به عنوان روشی جایگزین، پاک، سریع، مطمئن و بهصرفه به جای روش های فیزیکی و شیمیایی رایج پیشنهاد شده است. در این پژوهش، جداسازی و شناسایی سویه‌های مخمری آبزی با قابلیت سنتز نانوذرات اکسیدروی مورد مطالعه قرار گرفت. براساس روش کشت غنی سازی سویه مخمر NS02 که بالاترین مقاومت نسبت به یون روی را دارا بود (25/5 میلی مولار) به عنوان سویه برتر جهت آزمایشات سنتز زیستی نانواکسیدروی با راهکار عصاره عاری از سلول برگزیده شد. ارزیابی اولیه سنتز نانوذرات اکسیدروی با مشاهدات چشمی و مطالعه طیف جذبی مرئی-فرابنفش انجام شد. شک، اندازه و ترکیب عنصری نانوذرات اکسید روی سنتز شده توسط میکروسکوپ الکترونی روبشی مجهز به پرتوایکس پاشندۀ انرژی تعیینگردید. آنالیز پراش اشعه ایکس با هدف مطالعه ساختار بلوری نانوذرات اکسید روی استفاده شد. فعالیت ضد میکروبی نانوذرات اکسید روی در برابر باکتریهای بیماری زای جدا شده از نمونه های بالینی به روش انتشار از چاهک بر سطح آگار انجام گرفت . شناسایی سویه مخمر براساس ویژگی های ریخت شناسی و تعیین توالی نوکلئوتیدی ITS1-5.8S-ITS2 انجام شد. در این پژوهش برای نخستین بار قابلیت مخمر بومی آبزی Rhodotorula pacifica NS02 در سنتز برون سلولی نانوذرات اکسیدروی با میانگین اندازه 6/42 نانومتر با راهکار عصاره عاری از سلول گزارش گردید. با توجه به کوچک بودن اندازه نانوذرات و توزیع مناسب تاثیر مهاری مطلوب علیه جدایه های باکتریایی بالینی تست شده مشاهده شد این مطالعه، سعی در ارائه ذخایر ژنتیکی جدید از منابع عظیم میکروبی مخمر های آبزی، به عنوان کارخانه زیستی در سنتز نانوذرات اکسیدروی با خواص ضدمیکروبی با راهکار عصاره عاری از سلول دارد.
نوع مطالعه: مقاله پژوهشی |
موضوع مقاله:
بیوتکنولوژی
دریافت: 1400/1/9 | ویرایش نهایی: 1400/7/27 | پذیرش: 1400/4/14 | انتشار: 1400/7/27 | انتشار الکترونیک: 1400/7/27
دریافت: 1400/1/9 | ویرایش نهایی: 1400/7/27 | پذیرش: 1400/4/14 | انتشار: 1400/7/27 | انتشار الکترونیک: 1400/7/27
فهرست منابع
1. Abdolmaleki, S., Ghadermazi, M., Ashengroph, M., Saffari, A. & Moradi Sabzkohi, S. 2018. Cobalt (II), Zirconium (IV), Calcium (II) complexes with dipicolinic acid and imidazole derivatives: X-ray studies, thermal analyses, evaluation as in vitro antibacterial and cytotoxic agents. Inorganica Chimica Acta. 480: 70 - 82. [DOI:10.1016/j.ica.2018.04.047]
2. Ashengroph, M., Nahvi, I., Zarkesh-Esfahani, H. & Momenbeik, F. 2011. Candida galli Strain PGO6: A novel isolated yeast strain capable of transformation of isoeugenol into vanillin and vanillic Acid. Current Microbiology. 62: 990-998. [DOI:10.1007/s00284-010-9815-y]
3. Ashengroph, M. 2013. Isolation and characterization of a native strain of Aspergillus niger ZRS14 with capability of high resistance to zinc and its supernatant application towards extracellular synthesis of zinc oxide nanoparticles. Biological Journal of Microorganisms. 2(7): 29-44.
4. Ashengroph, M. 2014. Fast and extracellular synthesis of zinc oxide nanocrystals using the novel isolated yeast strain Candida sp. MY2. Cellular and Molecular Researches. 27(2): 155-166.
5. Ashengroph, M., Khaledi, A. & Bolbanabad, E.M. 2020. Extracellular biosynthesis of cadmium sulphide quantum dot using cell-free extract of Pseudomonas chlororaphis CHR05 and its antibacterial activity. Process Biochemistry. 89: 63-70. [DOI:10.1016/j.procbio.2019.10.028]
6. Ashengroph, M. & Hosseini, SR. 2021. A newly isolated Bacillus amyloliquefaciens SRB04 for the synthesis of selenium nanoparticles with potential antibacterial properties. International Microbiology. 24: 103-114. [DOI:10.1007/s10123-020-00147-9]
7. Baskar, G., Chandhuru, J., Fahad, K.S. & Praveen, A.S. 2013. Mycological synthesis, characterization and antifungal activity of zinc oxide nanoparticles. Asian Journal of Pharmaceutical Technology. 3: 142-146.
8. Bayda, S., Adeel, M., Tuccinardi, T., Cordani, M. & Rizzolio, F. 2019. The History of nanoscience and nanotechnology: from chemical-physical applications to nanomedicine. Molecules. 25(1): 112. [DOI:10.3390/molecules25010112]
9. Bolbanabad, E. M., Ashengroph, M. & Darvishi, F. 2020. Development and evaluation of different strategies for the clean synthesis of silver nanoparticles using Yarrowia lipolytica and their antibacterial activity. Process Biochemistry. 94: 319-328. [DOI:10.1016/j.procbio.2020.03.024]
10. Ding, X., Lin, K., Li, Y., Dang, M. & Jiang, L. 2020. Synthesis of biocompatible zinc oxide (ZnO) nanoparticles and their neuroprotective effect of 6-OHDA induced neural damage in SH-SY 5Y cells. Journal of Cluster Science. 31: 1315-1328. [DOI:10.1007/s10876-019-01741-2]
11. DurÁn, N., Marcato, P.D., Ingle, A., Gade, A. & Rai, M. 2010. Fungi-mediated synthesis of silver nanoparticles: characterization processes and applications. In: Rai M., Kövics G. (eds) progress in mycology. Springer, Dordrecht. [DOI:10.1007/978-90-481-3713-8_16]
12. Gahlawat, G. & Choudhury, A.R. 2019. A review on the biosynthesis of metal and metal salt nanoparticles by microbes. RSC Advances. 23: 12944-12967. [DOI:10.1039/C8RA10483B]
13. Jiang, J., Pi, J. & Cai, J. 2018. The Advancing of zinc oxide nanoparticles for biomedical applications. Bioinorganic Chemistry and Applications. 2018: 1062562. [DOI:10.1155/2018/1062562]
14. Kołodziejczak-Radzimska, A. & Jesionowski. T. 2014. Zinc oxide-from synthesis to application: a review. Materials (Basel). 7(4): 2833-2881. [DOI:10.3390/ma7042833]
15. Kumar, S., Stecher, G. & Tamura, K. 2016. MEGA7: Molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular Biology and Evolution. 33: 1870- 1874. [DOI:10.1093/molbev/msw054]
16. Kurtzman, C.P. & Fell, J.W. 2000. The yeasts: a taxonomic study (4th revised and enlarged edition). Elsevier, Amsterdam, pp 1-525.
17. Lim, Z.H., Chia, Z.X., Kevin, M., Wong, A.S. & Ho, G.W. 2010. A facile approach towards ZnO nanorods conductive textile for room temperature multifunctional sensors. Sensors and Actuators B: Chemical. 151: 121-126. [DOI:10.1016/j.snb.2010.09.037]
18. Mahamuni, P.P., Patil, P.M., Dhanavade, M.J., Badiger, M.V., Shadija, P.G., Lokhande, A.C. & Bohara, R.A. 2019. Synthesis and characterization of zinc oxide nanoparticles by using polyol chemistry for their antimicrobial and antibiofilm activity. Biochemistry and Biophysics Reports. 17: 71-80. [DOI:10.1016/j.bbrep.2018.11.007]
19. Moghaddam, A.B., Moniri, M., Azizi, S., Rahim, R.A., Ariff, A.B., Saad, W.Z., Namvar, F. & Navaderi, M. 2017. Biosynthesis of ZnO nanoparticles by a new Pichia kudriavzevii yeast strain and evaluation of their antimicrobial and antioxidant activities. Molecules. 22: 872-890. [DOI:10.3390/molecules22060872]
20. Mohd Yusof, H., Mohamad, R., Zaidan, U.H. & Rahman, N.A.A. 2019. Microbial synthesis of zinc oxide nanoparticles and their potential application as an antimicrobial agent and a feed supplement in animal industry: a review. Journal of Animal Science and Biotechnology. 10: 57. [DOI:10.1186/s40104-019-0368-z]
21. Rajabairavi, N., Raju, C.S., Karthikeyan, C., Varutharaju, K., Nethaji, S., Hameed, A.S.H. &
22. Shajahan, A. 2017. Biosynthesis of novel zinc oxide nanoparticles (ZnO NPs) using endophytic bacteria Sphingobacterium thalpophilum. Springer Proceedings in Physics. 189: 245-254. [DOI:10.1007/978-3-319-44890-9_23]
23. Rajan, A., Cherian, E. & Baskar, G. 2016. Biosynthesis of zinc oxide nanoparticles using Aspergillus fumigatus JCF and its antibacterial activity. International Journal of Modern Science and Technology. 1: 52-7.
24. Rajeshkumar, S. & Sivapriya, D. 2020. Fungus-mediated nanoparticles: characterization and biomedical advances. In: Shukla A. (eds) nanoparticles in medicine. Springer, Singapore. [DOI:10.1007/978-981-13-8954-2_7]
25. Rauf, M.A., Owais, M., Rajpoot, R., Ahmad, F., Khan, N. & Zubair, S. 2017. Biomimetically
26. synthesized ZnO nanoparticles attain potent antibacterial activity against less susceptible: S. aureus skin infection in experimental animals, RSC Advances. 7: 36361-36373. [DOI:10.1039/C7RA05040B]
27. Saravanan, M., Gopinath, V., Chaurasia, M.K., Syed, A., Ameen, F., Purushothaman, N. 2018. Green synthesis of anisotropic zinc oxide nanoparticles with antibacterial and cytofriendly properties. Microbial Pathogenesis. 115: 57-63. [DOI:10.1016/j.micpath.2017.12.039]
28. Sarkar, J., Ghosh, M., Mukherjee, A., Chattopadhyay, D. & Acharya, K. 2014. Biosynthesis and safety evaluation of ZnO nanoparticles. Bioprocess and Biosystems Engineering. 37: 165-171. [DOI:10.1007/s00449-013-0982-7]
29. Selvarajan, E. & Mohanasrinivasan, V. 2013. Biosynthesis and characterization of ZnO nanoparticles using Lactobacillus plantarum VITES07, Materials Letters. 112: 180-182. [DOI:10.1016/j.matlet.2013.09.020]
30. Shamsuzzaman, M.A., Khanam, H. & Aljawfi, R.N. 2017. Biological synthesis of ZnO nanoparticles using C. albicans and studying their catalytic performance in the synthesis of steroidal pyrazolines. Arabian Journal of Chemistry. 10: 1530-1536. [DOI:10.1016/j.arabjc.2013.05.004]
31. Singh, B.N., Rawat, A.K.S., Khan, W., Naqvi, A.H. & Singh, B.R. 2014. Biosynthesis of stable
32. antioxidant ZnO nanoparticles by Pseudomonas aeruginosa rhamnolipids. PLoS One. 4: 9.
33. Usman, M.S., El Zowalaty, M.E., Shameli, K., Zainuddin, N., Salama, M. & Ibrahim, N.A.
34. Synthesis, characterization, and antimicrobial properties of copper nanoparticles. International journal of nanomedicine. 8: 4467.
35. Velmurugan, P., Shim, J., You, Y., Choi, S., Kamala-Kannan, S., Lee, K.J., Kim, H.J. & Oh, B.T. 2010. Removal of zinc by live, dead, and dried biomass of Fusarium spp. Isolated from the abandoned-metal mine in South Korea and its perspective of producing nanocrystals. Journal of Hazardous Materials. 182: 317-324. [DOI:10.1016/j.jhazmat.2010.06.032]
36. Washington, J.A. & Sutter, V.L. 1980. Dilution susceptibility test: agar and macro-broth dilution procedures. In: Lennette, E.H., Balows, A., Hausler, J.R and WJTruant, J. editors. Manual of clinical microbiology, 3rd ed. Washington, DC: American Society for Microbiology, pp 453-458.
37. White, T.J. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: PCR Protocols, a guide to methods and applications, 315-322. [DOI:10.1016/B978-0-12-372180-8.50042-1]
38. Yamada, Y., Makimura, K., Mirhendi, H., Ueda, K., Nishiyama, Y., Yamaguchi, H. and Osumi, M. 2002. Comparison of different methods for extraction of mitochondrial DNA from human pathogenic yeasts. Japanese Journal of Infectious Diseases. 55: 122-125.
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 | این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
کلیه حقوق این وب سایت متعلق به یافته های نوین در علوم زیستی است.
طراحی و برنامه نویسی : یکتاوب افزار شرق
© 2015 All Rights Reserved | Nova Biologica Reperta
Designed & Developed by : Yektaweb